فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word

توجه : به همراه فایل word این محصول فایل پاورپوینت (PowerPoint) و اسلاید های آن به صورت هدیه ارائه خواهد شد

 فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word دارای ۲۷ صفحه می باشد و دارای تنظیمات در microsoft word می باشد و آماده پرینت یا چاپ است

لطفا نگران مطالب داخل فایل نباشید، مطالب داخل صفحات بسیار عالی و قابل درک برای شما می باشد، ما عالی بودن این فایل رو تضمین می کنیم.

فایل ورد فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word  کاملا فرمت بندی و تنظیم شده در استاندارد دانشگاه  و مراکز دولتی می باشد.

توجه : در صورت  مشاهده  بهم ریختگی احتمالی در متون زیر ،دلیل ان کپی کردن این مطالب از داخل فایل ورد می باشد و در فایل اصلی فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word،به هیچ وجه بهم ریختگی وجود ندارد

بخشی از متن فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word :

بخشی از فهرست مطالب فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word

مقدمه    
۲- ۱- جداسازی ریزوکتونیا از خاک    
۲-۱-۱- جداسازی ریزوکتونیا از خاک به روش طعمه گذاری    
۲-۱-۲- جداسازی ریزوکتونیا از خاک به روش محیط کشت    
۲-۱-۳- جداسازی ریزوکتونیا از خاک به روش غربال    
۲-۱-۳-۱- روش غربالگری خشک    
۲-۱-۳-۲- روش غربالگری تر    
۲-۱-۳-۳- روش غربالگری و شناور شدن    
۲-۱-۴- جداسازی ریزوکتونیا از خاک به روش کاغذ صافی    
۲-۱-۵- جداسازی ریزوکتونیا از خاک به روش لولههای غوطهور در خاک    
۲-۲- جداسازی ریزوکتونیا از مواد آلی    
۲-۳- گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا    
۲-۴- گزارش برخی از گروههای آناستوموزی Rhizoctonia  solani از برخی گیاهان در دنیا    
۲-۵- گزارش برخی گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران    
۲-۶- تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا    
منابع    

بخشی از منابع و مراجع فایل ورد کامل تحقیق روش های جداسازی ریزوکتونیا از خاک و تعیین گروههای آناستوموزی ریزوکتونیا از برخی گیاهان در ایران و دنیا ۲۷ صفحه در word

 Boysen, M., Borja, M., Delmoral,. C, Salazar, O. and Rubio, V. 1996. Identification at strain level  of Rhizoctonia solani AG-4 isolates by direct sequence of asymmetric PCR products of  the  ITS. regions. Current Genetics 29: 174-

Agrios, G. N., 2005. Plant Pathology, 5th Ed. Academic Press, San Diego 922 p

Singleton, L. L., Mihail, J. D., and Rush, C. M. 1992. Methods for Research on Soil Borne Phytopathogenic Fungi. APS Press. USA 265 p

Sneh, B., Burpee, L., and Ogoshi, A. 1991. Identification of Rhizoctonia species. The American Phythological Society. St. Paul, MN 133 p

Sneh, B., Suha Jabaji-Hare, S. N. and Dijst, G. 1995. Rhizoctonia Species: Taxonomy, Molecular, Biology, Ecology, Pathology and Disease Control. Kluwer Akademic Published 578 p

Sneh, B., Yamohah, E., and Stewart, A. 2004. Hypovirulent Rhizoctonia spp. isolates from New Zealand soils protect radish seedlings against Andersen, T. F., Stalpers, J. A. 1994. A check-list of Rhizoctonia epithets. Mycotaxon 51: 437-

Hyakumachi, M., and Ui, T. 1984. Comparison of soil pellet and sieving- floatation method  for enumeration of sugarbeet root rot fungus (Rhizoctonia solani AG 2-2). Annual Review. Phytopathology. Society of Japan 50: 551-

Boosalis, M. G., and  Scharen, A. L. 1959. Methods for microscopic detection of Aphanomyces euteiches and Rhizoctonia solani and for isolation of Rhizoctonia solani associated with plant debris. Phytopathology 49: 192-

Papavizas, G. C., and Davey, C. B.1959. Isolation of Rhizoctonia solani Kuhn from naturally infested and artificially inoculated soils. Plant Disease 43: 404-

Papavizas, G. C 1968. Survival of root-infecting fungi in soil. VII. Distribution of Rhizoctonia solani in various physical fractions of naturally and artificially infested soils. Phytopathology 58: 746-

Papavizas, G. C., Adams, P. B., Lumbsden, R. d., Lewis, J. A., Dow, R. L., Ayers, W. A., and Kantzes, J. G. 1975. Ecology and epidemiology of Rhizoctonia solani in field soil. Phytopathology 65: 871-

Papavizas, G. C., and Lewis, J. A. 1986. Isolating, identifying and producing inoculum of Rhizoctonia solani. Pages 50-53 in K.D. Hickey (ed.) Methodes for Evaluating Pesticides for the Control of Plant Pathogens APS Press, st. Paul, MN

Paulitz, T. C., and Schroeder, K. L. 2005. A new method for the quantification of Rhizoctonia  solani and R. oryzae from soil. Plant Disease 89: 767-

مقدمه

 ریزوکتونیا از جمله قارچ­های بازیدیومیست خاکزی است که بیماری­های شدیدی در میزبان­های­ خود بوجود می­آورد و در بسیاری از اندام­های گیاهی از جمله ریشه، طوقه، ژوخه[۱]، پداژه[۲] و دیگر اندام­های گیاهی که بر سطح یا درون خاک می­رویند، باعث آلودگی می­شود. بیماری­های ریزوکتونیایی در سرتاسر جهان شیوع دارند. این قارچ­ها قادرند به صدها نوع مختلف گیاهان حمله و طیف وسیعی از بیماری­ها را ایجاد کنند. جدایه­های این قارچ از روی بیش از ۱۵۰ گونه­ی مختلف گیاهی جدا شده­اند (Boysen et al., 1996). میزبان آن سبزی­ها و گل­ها، تعدادی گیاه زراعی، انواع چمن­ها، گیاهان زینتی چند­ساله، درختچه­ها و درختان است. معمولی­ترین نشانه­های بیماری­های ریزوکتونیایی به صورت مرگ­گیاهچه در دان­نهال­ها، پوسیدگی ریشه و ساقه، شانکر ساقه و پوسیدگی اندام­های ذخیره­ای است.(Agrios, 2005)  این قارچ در ایران از روی ۱۰۴ میزبان گزارش شده است (ارشاد، ۱۳۸۸)

آنامورف[۳] این قارچ با خصوصیاتی مشخص می­شود که عبارت است از وجود بند دلیپور[۴] در دیواره­ی عرضی، شکل­گیری انشعاب در نزدیکی محل دیواره­ی عرضی و فرورفتگی ریسه در محل انشعاب، وجود دیواره­ی عرضی در انشعاب ایجاد شده، انشعابات ۹۰ درجه، عدم وجود قوس اتصال، عدم وجود اسپور، عدم وجود ریشه نما[۵]، ریسه­های رنگدانه­دار، تولید اسکلروت[۶] و سلول­های زنجیروار[۷] است (Singleton et al., 1992)

این قارچ در بیشتر خاک­ها وجود دارد و وقتی در مزرعه­ای مستقر شد، به مدت نامحدود در آن باقی می­ماند. انتشار این قارچ از طریق باران، آب آبیاری، یا سیلاب، ابزار و هر وسیله­ی دیگر که خاک را حمل کند و با مواد ازدیادی آلوده یا بیمار است (Agrios, 2005). ریزوکتونیا در خاک بصورت اسکلروت و ریسه با دیواره­ی ضخیم و رنگدانه­دار بقا می­یابد و معمولاً در عمق ۱۵ تا ۲۰ سانتی­­متری از سطح خاک قرار دارد (Boosalis and Scharen, 1959). این قارچ به صورت یکنواخت در مزرعه توزیع نمی­شود و معمولاً جمعیت آن در خاک کم است (Hyakumachi and Ui, 1984).  فعالیت بیمارگری روی میزبان زنده و فعالیت پوده­زیستی[۸] آن روی مواد آلی تازه است (Sneh et al., 1991). بسیاری از عوامل محیطی در بقاء آن اثر دارد که از آن جمله می­توان به بافت خاک، پتانسیل آب، دما، تغذیه­ی خاک وگیاه و عوامل میکروبی خاک اشاره کرد. بقاء در خاک­ مرطوب بیشتر از خاک­ خشک است (Sneh et al., 1995). دمای بهینه­ی بیشتر گروه­های آناستوموزی[۹] این قارچ برای ایجاد عفونت حدود ۱۵ تا ۱۸ درجه­ی سانتی­گراد است. ولی بعضی از گروه­ها در دمای بالاتر حتی ۳۵ درجه­ی سانتی­گراد بیشترین فعالیت را دارند (Agrios, 2005)

گونه­های ریزوکتونیا بر اساس تعداد هسته در سلول­های ریسه­ی رویشی به گروه­های دوهسته­ای[۱۰] و چندهسته­ای[۱۱] تقسیم می­شوند. شکل جنسی اعضا دوهسته­ای به جنس Ceratobasidium و شکل جنسی اعضا چندهسته­ای به دو گونه­ی Waitea circinata و Thanatephorus cucumeris تعلق دارد (Andersen and Stalpers, 1994). شرایط محیطی خاصی برای تشکیل فرم جنسی این قارچ نیاز است که هنوز بطور کامل شناخته نشده­ است. رطوبت ۱۰۰- ۹۰ درصد، دمای حداقل ۱۸-۱۴ و حداکثر ۲۶-۲۳ درجه­ی سانتی­گراد برای تشکیل بازیدیوم و بازیدیوسپور نیاز است. از نظر نیاز نوری، برخلاف فرم غیرجنسی که برای تولید حجم زیاد ریسه نیاز به گذراندن شب دارند، برای تشکیل لایه­ی هیمنیوم به نور در روز و برای بالغ­شدن بازیدیوم و تشکیل بازیدیوسپور نیاز به شدت­ نورهای خاصی دارند. فرم جنسی روی بستره­های مختلفی از جمله ماسه­های درشت کف رودخانه، خاک­های لومی قرمزقهوه­ای، خاک­های لومی­رسی، بافت­­های گیاهی شامل سیب­زمینی، پنبه و چغندرقند و همچنین عصاره­ی خاک به همراه آگار تشکیل می­شود  (Sneh et al., 1991)

۲- ۱- جداسازی ریزوکتونیا از خاک

 جداسازی این بیمارگر از خاک به دلیل جمعیت پایین آن در خاک، دشوار است (Paulitz and Schroeder, 2005). تحقیقات کمی و کیفی زیادی در مورد جداسازی ریزوکتونیا از خاک، انجام شده ­است و کارایی روش­های مختلف برای جداسازی R. solani از خاک، توسط محققان زیادی مقایسه شده است

۲-۱-۱- جداسازی ریزوکتونیا از خاک به روش طعمه­گذاری

تحقیقات کیفی برای جداسازی از خاک، شامل آلودگی میزبانی است. طعمه­های حساس گیاهی برای تخمین غلظت مایه[۱۲] و پتانسیل مایه­­ی بیمارگر در خاک استفاده می­شود. روش­های مبنی بر این قاعده، شامل دفن و پوشش متعاقب بستره­های متنوعی به عنوان طعمه برای ریزوکتونیا است. طعمه­ها شامل گیاهان میزبان حساس (Sanford, 1952; Davey and Papavizas, 1962; Sneh et al.,1966)، دانه­های سترون شده ((Papavizas et al.,1975، قطعات ساقه مانند الیاف کتان (Blair, 1945)، گندم سیاه(Fagopyrum esculentum) Papavizas and Davey, 1959; Davey and Papavizas, 1962; Sneh et al.,1966)) لوبیا و پنبه (Sneh et al.,1966) است

پاپاویزاس و همکاران (Papavizas et al., 1975) برای جداسازی ریزوکتونیا از خاک، یک گرم بذر چغندرقند سترون شده را با ۱۰۰ گرم خاک مرطوب (ظرفیت نگهداری رطوبت ۵۰ درصد) در تشتک­های پتری با قطر نه سانتی­متر مخلوط کردند. تشتک­های پتری را به مدت ۴۸ ساعت در دمای ۲۶-۲۴ درجه­ی سانتی­گراد نگهداری کردند و پس از آن بذرها را خارج کرده و با آب روان شستند و روی حوله­ی کاغذی خشک کردند. بذرها را روی محیط کشت آب- آگار[۱۳] (۱۶ گرم آگار در یک لیتر آب مقطر) اسیدی یا آب- آگار همراه با ۲۵۰ میکروگرم کلرامفنیکل قرار داده و پس از ۲۴ ساعت نوک ریسه­های رشد کرده را به محیط کشت PDA[14] )عصاره­ی ۳۰۰ گرم سیب­زمینی، ۱۶ گرم آگار، ۲۰ گرم دکستروز، یک لیتر آب مقطر) منتقل کردند

پاپاویزاس و دیوی متوجه شدند که روش آلودگی میزبانی، بهترین روش برای مطالعه­ی طیف وسیعی از جدایه­های بیماری­زاست (Sneh et al., 1991). در تراکم بالای مایه، بهترین روش استقرار[۱۵] بذر چغندرقند است (Roberts and Herr, 1979)

[۱]. Tuber

[۲]. Corm

[۳]. Anamorph

[۴]. Dolipore septum

[۵]. Rhizomorph

[۶]. Sclerot

[۷]. Monilioid cell

[۸]. Saprophyte

[۹]. Anastomosis group

Binucleate Rhizoctonia

[۱۱]. Multinucleate Rhizoctonia

Inoculum

[۱۳]. Water Agar

Potato Dextrose Agar

Colonization