پاورپوینت کامل دستورالعمل تشخیص آزمایشگاهی باکتریهای مولد اسهال ۱۱۲ اسلاید در PowerPoint

توجه : این فایل به صورت فایل power point (پاور پوینت) ارائه میگردد

 پاورپوینت کامل دستورالعمل تشخیص آزمایشگاهی باکتریهای مولد اسهال ۱۱۲ اسلاید در PowerPoint دارای ۱۱۲ اسلاید می باشد و دارای تنظیمات کامل در PowerPoint می باشد و آماده ارائه یا چاپ است

شما با استفاده ازاین پاورپوینت میتوانید یک ارائه بسیارعالی و با شکوهی داشته باشید و همه حاضرین با اشتیاق به مطالب شما گوش خواهند داد.

لطفا نگران مطالب داخل پاورپوینت نباشید، مطالب داخل اسلاید ها بسیار ساده و قابل درک برای شما می باشد، ما عالی بودن این فایل رو تضمین می کنیم.

توجه : در صورت  مشاهده  بهم ریختگی احتمالی در متون زیر ،دلیل ان کپی کردن این مطالب از داخل فایل می باشد و در فایل اصلی پاورپوینت کامل دستورالعمل تشخیص آزمایشگاهی باکتریهای مولد اسهال ۱۱۲ اسلاید در PowerPoint،به هیچ وجه بهم ریختگی وجود ندارد

بخشی از مطالب داخلی اسلاید ها

پاورپوینت کامل دستورالعمل تشخیص آزمایشگاهی باکتریهای مولد اسهال ۱۱۲ اسلاید در PowerPoint

اسلاید ۴: تهیه نمونه مدفوع و سوآب از مدفوعبرای نمونه مدفوع ، از یک ظرف درپیچدار تمیز با اندازه مناسب استفاده نمایید .هنگامی که نمونه به آزمایشگاه می رسد لازم است به سرعت آزمایش بر روی آن انجام شود . ( بیشتر از ۲ ساعت از زمان نمونه گیری نگذشته باشد.)اگر ناچار به نگهداری نمونه ها بیشتر از ۲ ساعت هستید ، سو آب را درون نمونه مدفوع قرار داده و پس از حرکت چرخشی ، آن رادر یک محیط انتقالی تلقیح کنید.اگر مدفوع حالت مخاطی دارد سعی کنید نمونه را همراه مخاط در محیط ترانسپورت تلقیح نمایید.

اسلاید ۵: سوآب مقعدیبرای نمونه گیری از سوآب پنبه ای سالم استفاده کنیدو دقت کنید که پنبه سر آن کنده نشده باشد.ابتدا سوآ ب را با فرو کردن در محیط ترانسپورت استریل مرطوب کرده و سپس به اندازه۲/۵تا ۳/۵سانتی متر داخل اسفنکتر رکتوم نموده و بچرخانید و بیرون بکشید . با توجه به تغییر رنگ پنبه ی سر سوآ ب مطمئن شوید سوآ ب به مدفوع آغشته است .تعداد سوآب مورد نیاز بستگی به تعداد عوامل پاتوژن مورد مطالعه دارد.معمولاحداقل ۲ سوآ ب باید تلقیح شود .

اسلاید ۶: دستورالعمل عمومی برای جمع آوری نمونه نمونه را قبل از درمان آنتی بیوتیکی جمع آوری کنید. امکان آلوده شدن نمونه را با عوامل داخلی وخارجی را به حداقل برسانید. برروی ظرف نمونه، اسم بیمار، تاریخ وساعت نمونه برداری و شماره آن را بنویسید. نمونه باید به اندازه کافی باشد، مقادیر ناکافی نمونه باعث جواب منفی کاذب می گردد.درخواست کشت وبررسی باید مشخص گردد.درغیراینصورت آزمایشگاه تنها نمونه را ازنظر سالمونلا، شیگلا بررسی می کند نمونه را دریک ظرف درب دار با درب محکم جمع آوری کنید

اسلاید ۷: ملاحظات عمومی نمونه مدفوع را خنک نگهدارید و آن را انکوبه نکنید.اگر نمونه مدفوع را نمی توان درعرض یک یا دو ساعت بعد ازجمع آوری، کشت داد، آن را باید به محیط ترانسپورت (برای مثال کاری-بلر یا بافر نمکی گلیسرول) انتقال داد.ازکاغذ توالت برای جمع آوری مدفوع استفاده نکنید. کاغذ توالت ممکن است حاوی نمکهای باریم باشد که برای بعضی پاتوژنهای مدفوعی مهارکننده رشد هستند

اسلاید ۸: نمونه های مدفوع قابل پذیرش برای کشت دستورالعمل کلی: با ادرار آلوده نشده باشد.قسمتی از مدفوع را که حاوی چرک، خون یا موکوس است برای کشت انتخاب کنید.حدود ۵ گرم مدفوع برای کشت کافی است.بعضی ظروف مدفوع دارای خطوطی هستند که مقادیر را نشان می دهد.ارسال نمونه در۲تا ۳ روزجداگانه امکان جداسازی یک پاتوژن را افزایش می دهد.

اسلاید ۹: مدفوع باید تازه باشد و۱ تا ۲ساعت بعد از نمونه برداری به آزمایشگاه برسد. درمحیط نگهدارنده بافرنمکی گلیسیرولهترانسپورت کاری-بلر حرارت ۴ تا ۶ درجه سانتیگراد به آزمایشگاه ارسال شود.سواب رکتال حتما باید درمحیط ترانسپورت ارسال شود.

اسلاید ۱۰: تلقیح به محیط انتقال در صورتی که ناچار به تلقیح نمونه پس از ۲ ساعت باشیم لازم است نمونه ها را در یخچال و یا در محیط های انتقالی جهت بقا بیشتر قرار دهیم . محیط انتقالی تلقیح شده نیز باید در سرما نگهداری شود . زیرا این شرایط برای پاتوژن هایی مانند شیگلا و کمپیلوباکتر بسیار مهم است . البته بیشتر عوامل پاتوژن به استثنا این دو ارگانیسم قابلیت زنده ماندن برای مدتی در محیط انتقالی ، دردمای محیط را دارند (حداکثر یک هفته ). هنگامی که نمونه ها در محیط انتقالی قرار داده شده و نیاز به نگهداری آنها برای مدت بیشتری می باشد لازم است که در یخچال یا فریزر نگهداری شوند.

اسلاید ۱۱: Cary Blair محیط انتقالبرای نگهداری و انتقال سالمونلا ، شیگلا،ویبریو کلره،اشریشیاکلی و یرسینیا انتروکولیتیکا بسیار مورد استفاده قرار می گیرد.این محیط به میزان ۵ سی سی(PH=8.4) در لوله در پیچدار با اندازه متوسط ریخته می شود و باید قبل از استفاده و بعد از تلقیح نمونه به آن در یخچال نگهداری شود. این محیط انتقالی پس از آماده سازی حداکثر۱۲ ماه قابل استفاده است به شرطی که، حجم آن کاهش پیدا نکرده و هیچگونه علائم آلودگی و تغییر رنگ در آن مشاهده نشود.

اسلاید ۱۲: مراحل تلقیح نمونه در محیط انتقالیحداقل ۲ سوآب مدفوع یا مقعدی را به ته لوله حاوی محیط وارد کنید.پس از قرار دادن سوآب در لوله قسمت چوبی بیرون از لوله را بشکنید.در لوله را محکم ببندید.-نمونه ها را داخل یخچال نگهداری کنید و اگر امکان نگهداری در یخچال وجود نداردمحیط انتقال حاوی سوآ ب را در مکانی خنک ودور از نور جهت پایین نگه داشتن دما قرار دهید.

اسلاید ۱۳: محیطهای کشت محیطهای انتفال نمونهمحیطهای کشت اولیهمحیطهای شناسائی

اسلاید ۱۴: نیاز به محیط مغذی، افتراقی وانتخابیمحیط روده حاوی باکتریهای هوازی–بی هوازی- عدم رشد باکتریهای بیهوازی بعلت انکوباسیون هوازی- وفور باکتریهای هوازی گرم منفی ومثبت- تعداد کم عوامل پاتوژن نسبت به فلورنیاز به محیط مغذی، افتراقی وانتخابی است تا امکان یافتن پاتوژن را افزایش دهیم

اسلاید ۱۵: محیطهای کشت اولیهمحیط های کشت روتین برای سالمونلا وشیگلا به چهارگروه عمده تقسیم می شوند:آبگوشت مغذی محیط افتراقی محیط های نسبتا انتخابی محیط های فوق العاده انتخابی

اسلاید ۱۶: آبگوشت مغذی استفاده ازاین محیط باعث جلوگیری از رشد فلورطبیعی درطی ساعت اولیه انکوباسیون می شود. با ساب کالچرازاین محیط شانس یافتن تعداد کم پاتوژن در نمونه افزایش می یابد.Gram negative (GN) Brothالف)S Fب )سلنیت F

اسلاید ۱۷: GNآبگوشت مغذی جداسازی شیگلا وسا لمونلا با کشت دراین آبگوشت بیش ازوقتی است که نمونه مدفوع بطورمستقیم برروی محیط اختصاصی کشت داده شود.روش عمل : تریپتوز دراین محیط بعنوان ماده مغذی عمل می کند.سیترات و دزوکسی کولات بعنوان ماده انتخابی عمل کرده ورشد باکتریهای گرم مثبت و بعضی کلی فرمها را مهار می کند.مانیتول موجود درمحیط رشد سالمونلا وشیگلاهای متابولیزه کننده مانیتول را افزایش می دهد.بافر فسفات ازکاهش pH واسیدی شدن آن جلوگیری می کند

اسلاید ۱۸: محیط آبگوشت مغذیبعد از کشت نمونه درآبگوشت مغذی نمونه را از روی این محیط برروی محیط های افتراقی یا انتخابی کشت دهید. بعد از ۴تا ۶ ساعت GN.SF broth بعد از ۱۲ ساعت و بعد از آن هرچه سریعترپلیت ها را سپس در۳۵ تا ۳۷ درجه انکوبه کنید

اسلاید ۱۹: محیط افتراقیباعث تمایز باکتریهای لاکتوز منفی از لاکتوزمثبت می شود وجلوی رشد باکتریهای گرم مثبت رانیز می گیرد.الف) مک کانکی آگارEMBب) لاکتوز منفیلاکتوزمثبتمک کانکی آگارEMB

اسلاید ۲۰: محیط های فوق العاده انتخابی این محیطها بطور روتین استفاده نمی شود.گران قیمت هستند.درموارد بررسی Outbreak توصیه می شود.برای سالمونلا مناسب هستند ولی برای شیگلا مناسب نیستند.الف) بریلیانت گرین برای سالمونلا بجز سالمونلا تیفی وسالمونلا پاراتیفی ب) بیسموت سولفیت برای سالمونلا مخصوصا تیفی

اسلاید ۲۱: محیط های نسبتا انتخابی این محیط ها باعث جلوگیری از رشد اکثر اعضاء خانواده آنتروباکتریاسه می شود.به سالمونلا وشیگلا اجازه رشد می دهند.تولید SH2 را معین می کند.الف) Hektoen enteric agar (HE)ب) Xylose –lysine-desoxycholate(XLD)ج) Salmonella-Shigella agar (SS)د) دزاکسی کلات

اسلاید ۲۲: محیط XLDسدیم دزوکسی کولات باعث مهار بعضی باکتریهای فلورطبیعی روده فنل رد معرف pH فلور طبیعی گزیلوز، سوکروز ولاکتوز را تخمیر کلنی های زرد (ناشی از اسید)شیگلا ،|پرویدنسیا وبعضی گونه های پروتئوس این قندها را تخمیر نمی کنند کلنی های قرمز(ناشی از قلیا)سالمونلا وادوارد سیلا گزیلوز را تخمیر می کند ولی سوکروز یا لاکتوز را تخمیر نمی کندو ایجاد اسید می کند ولی چون لیزین موجود درمحیط را دکربوکسیله می کند وقلیا ایجاد می کند.به اسید ایجاد شده برتری می یابد وکلنی های قرمز(ناشی ازقلیا) ایجاد می کند وSH2 تولید شده باعث ایجاد کلنی های با مرکزسیاه می شود.

اسلاید ۲۳: Xylose lysine desoxycholate(XLD)Salmonella-Shigella agar(SS

اسلاید ۲۴: lactose-fermenting A. Surface of MacConkey agar with 24-hour growth of redcolonies . The diffuse red color in the agar surrounding the colonies is produced by organisms that avidly ferment lactose . producing large quantites of mixed acids and cause precipitation of the bile salts in the medium surrounding the col-or . ( e.g. Escherichia coli )lactose-fermenting colonies B. Surface of MacConkey agar illustrating both red clear non-lactose-fermenting colonies . and smaller

اسلاید ۲۵: C and D. Surface of EMB agar plates illustrating the green sheen produce by av-id lactose (or sucrose) fermenting members of the Enterobacteriaceae . Most st- and since E. coli rains of E. coli produce colonies with this appearance of EMB agarthe appearance of is among the most frequent isolates from clinical specimens such colonies can often serve as presumptive identification of E. coli . howevercharacteristics other than the production of a green sheen on EMB must be asse-since other lactose- sed before an organism can be definitely identified as E. coli fermenting Enterobacteriaceae can have a similar appearance .

اسلاید ۲۶: روش کار محیط XLD بعد ازکشت پلیت ها را ۲۴- ۱۸ ساعت دردمای ۳۵ درجه انکوبه می کنیمخواندن پلیت ها الف) کلنی های زرد گونه های اشرشیاکلی ، انتروباکتر، کلبسیلا و سراشیا، سیتروباکتر دیورسوس و یرسینیا آنتروکولیتکا ب) کلنی زرد با مرکز سیاه سیتروباکتر فروندی ، پروتئوس ولگاریسج) کلنی های قرمز شیگلا ، پروید نیسیا ، سالمونلا SH2 منفید) کلنی قرمز با مرکز سیاه گونه های سالمونلا و ادوارد سیلا ُ

اسلاید ۲۷: نکات قابل توجه در مورد ساخت محیط محیط XLD باید قرمز روشن باشد. اگر م