فایل ورد کامل ریزتکثیر و گلدهی آزمایشگاهی در Pentanema indicum Ling

توجه : به همراه فایل word این محصول فایل پاورپوینت (PowerPoint) و اسلاید های آن به صورت هدیه ارائه خواهد شد

این مقاله، ترجمه شده یک مقاله مرجع و معتبر انگلیسی می باشد که به صورت بسیار عالی توسط متخصصین این رشته ترجمه شده است و به صورت فایل ورد (microsoft word) ارائه می گردد

متن داخلی مقاله بسیار عالی، پر محتوا و قابل درک می باشد و شما از استفاده ی آن بسیار لذت خواهید برد. ما عالی بودن این مقاله را تضمین می کنیم

فایل ورد این مقاله بسیار خوب تایپ شده و قابل کپی و ویرایش می باشد و تنظیمات آن نیز به صورت عالی انجام شده است؛ به همراه فایل ورد این مقاله یک فایل پاور پوینت نیز به شما ارئه خواهد شد که دارای یک قالب بسیار زیبا و تنظیمات نمایشی متعدد می باشد

توجه : در صورت مشاهده بهم ریختگی احتمالی در متون زیر ،دلیل ان کپی کردن این مطالب از داخل فایل می باشد و در فایل اصلی فایل ورد کامل ریزتکثیر و گلدهی آزمایشگاهی در Pentanema indicum Ling،به هیچ وجه بهم ریختگی وجود ندارد

تعداد صفحات این فایل: ۱۷ صفحه

اما ما در اینجا برای اولین بار گزارش خواهیم کرد که غلظت پایین آدنین سولفات (۱۰ mg l_1) برای P.indicum موثر است.ریشه ها بعد از انتقال شاخه ها به محیط کشت حاوی غلظت پایین IBA (0.5 mg l_1) القا شد(۸۴%)( Thulaseedharanو Vaidyanathan 1990).در عوض، غلظت زیاد IBA باعث ریشه دهی (۱۰۰%) شد.گیاهچه های ریشه دار با موفقیت به خاک دارای ۹۶%میزان ماندگاری انتقال داده شد. گیاهان احیاء شده هیچ تغییر آشکاری درمورفولوژی یا ویژگی ها رشدی در مقایسه با گیاهان دهند مربوطه نشان ندادند.واکنش گلدهی تا حد زیادی به غلظت موارد استعمال شده بستگی داشت. لزوم تنظیم کنند رشدگیاهی برای گلدهی آزمایشگاهی متغیر بود.در این مطالعه،محیط های کشت حاوی اکسین چه به تنهایی و چه در ترکیب با BAP باعث گلدهی در کشت های کالوز P.indicum شد.یافته های مشابه توسط Tepferو دیگران (۱۹۶۶) و Peeters و دیگران (۱۹۹۴) مشاهده شد. ضرورت اکسین برای القا و نمو گل در چند گیاه از قبیل Torenia ، Vigna radiate، Vigna mungo، Pisum sativum  و Perilla frutescens گزارش شده است.در بررسی حاضر، IBA باعث حداکثر تعداد جوانه های مولد(تناسلی ) شد(شکل ۲E و F).قابلیت گلدهی با افزایش غلظت IBA مورد استفاده در شاخه های احیاء شده که از محیط کشت BAP+IAA+آدنین سولفات جدا شده بودند افزایش یافت.تأثر موثر وکارامد پورین ها و پیریمیدن ها بر القای گل توسط Chailakhyan و دیگران (۱۹۶۱) در مورد Perilla nankinensis  کشت شده در آزمایشگاه نیز گزارش شده است.مشاهدات ما با گزارش فوق مبنی بر اینکه سطح مناسب آدنین و BAP برای گلدهی مفید فایده است مطبقت دارد.مشخص شد که گلدهی در آزمایشگاه نیز تحت تأثر سطوح و نسبت دو مولف اصلی یعنی کربوهیدرات ها ومواد معدنی رخ می دهد.حضور منبع کربوهیدرات یک الزام یوبیکیتس(ubiquitous )برای نمو و القای معتبر گل ها در آزمایشگاه میباشد.گلدهی  P. indicum به حضور منبع کربوهیدرات بستگی دارد.در بررسی حاضر،مشخصشد که ساکارز بهترین گزنه برای القای جوان گل م باشد. فراوانی بالای گلدهی بعد از تکمیل محیط کشت با ۳% (w/v) ساکارز مشاهده شد.این نتیجه با گزارشات پیشین در Lycopersicon esculantum، سیب زمینی، V.mungo، P. sativum،و Gentiana trifolia مطابقت دارد.براساس فرضی انحراف مادمغذی گلدهی ،نسبت C/N در جوانه در طی القای گل افزایش میابد.در بررسی حاضر، محیط کشت MS با مکمل ۳% (w/v) ساکارز و تنظیم کننده های رشد گیاه ،چند شاخ گلدار تولید کرد.این نتیجه نشان می دهد که نسبت C/N برای گلدهی مهم است.مطالعت زیادی تأثیر سطح نیتروژن بر گلدهی آزمایشگاهی را گزارش کرده اند.

عنوان انگلیسی:Micropropagation and in vitro flowering in Pentanema indicum Ling~~en~~

Pentanema indicum Ling. belongs to the family Asteraceae (Compositae). It is a female antifertility drug used by tribes in Bihar state of India. The plant is an annual and is distributed throughout India, ascending up to an altitude of 1800 m in Himalayas, Pakistan, Burma, China, Sri Lanka, Thailand and Africa. It is an erect, rigid, leafy herb 1–۳ ft in height. The roots are tough, woody and externally pale brown in colour. Stem terete, striate, with many pubescent branches. Leaves are variable in size, sessile, oblong–lanceolate, acute, entire or serrulate, rough or scrabid with short appressed hairs on both sides. Ray florets 12–۲۴, much longer than involcure and disc florets scanty. Many compounds have been isolated from P. indicum namely, sesquiterpene– vicolides, monoterpenediol–vicodiol and thymol esters (Saradha Vasanth et al. 1990; Mossa et al. 1997), cis–cis germacranolide (Sawaiker et al. 1998), 4,5,6-trihydroxy- 4-7-dimethoxy flavone (Krishnaveni et al. 1997). Vicolide D showed abortifacient and antifertility activities (Alam et al. 1989). The hexane soluble fraction showed antiviral activity against Ranikhet virus (Chowdhury et al. 1990). In vitro flowering offers a unique system in the study of molecular basis and hormonal regulation of flowering. There is also a possibility of using in vitro flowering in ecological and genetic studies. It is a modern area of research and has great potential in plant breeding programmes. In vitro propagation of medicinal plants could help in raising disease free health clones in a large scale for extraction of pure drug. To date only one report available on regeneration for this important medicinal plant (Thulaseedharan and Vaidyanathan 1990) reported callus induction and plant regeneration in Vicoa indica. However, regeneration using apical bud and nodal explants derived from mature plants is not available. Therefore, the efficiency of apical bud and nodal explants to regenerate P. indicum plants has been explored in the present study. In addition, we have demonstrated a callus mediated plant regeneration system and in vitro flowering. Actively growing shoots were used as the explants source. The shoots were separated from the mother plants, defoliated and cut into 4–۶ cm pieces. The explants (leaf and stem) were surface sterilized with 70% (v/v) ethanol for 60 s and 0.1% (w/v) mercuric chloride for 10 min, washed four times with sterile distilled water. Leaf and stem segments 0.5–۱۰ cm in length, were prepared and inoculated on Murashige and Skoog (MS) medium (Murashige and Skoog 1962) supplemented with plant growth regulators. The pH of the medium was adjusted to 5.7 with 0.1 N NaOH or 0.1 N HCl before autoclaving at 1.06 kg cm
۲ and 121°C for 15 min. All culture media contained 3% (w/v) sucrose and solidified with 0.8% (w/v) agar. Basal medium supplemented either with BAP or BAP combined with IBA were used for callus induction from leaf and stem explants. The callus induction rate (explants with callus formation) was determined after 30 days. After four weeks, the calli proliferated upon the leaf and stem segments. The calli were transferred on MS medium supplemented with different concentrations and combinations of BAP and IAA to induce plant regeneration. Regenerated shoots were dissected out, cut into shoot tips and single nodal segments, and subcultured on MS medium containing different concentration of an auxin and a cytokinin. Multiplication of these shoots was tested in the same media or in media supplemented with adenine sulfate (1.0 mg l
۱ ). After four weeks of culture plantlets were transferred to fresh medium containing same composition of ingredients. Individual shoots, which were 3–۴ cm long were excised from the shoot clump and transferred to half strength MS medium containing IAA and IBA (0.5, 10, 1.5 and 2.0 mg l
۱ ). All cultures were incubated at 252°C under cool fluorescent light (3000 Lux; 16-h photoperiod). After 35 days the rooted plantlets were removed from the tubes, washed thoroughly with sterile distilled water to remove traces of agar and planted in small plastic pots filled with mixture of sterile soil, sand, vermiculite (1 : 1 : 1). The potted plants were irrigated with MS basal salts solution (1/4 strength) devoid of sucrose and myo-inositol every four days for three weeks.

$$en!!